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3.11.2: Masculino y femenino - Biología

3.11.2: Masculino y femenino - Biología



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En la singamia, siempre hay dos socios. Para mejorar el reconocimiento de la pareja, existen muchos mecanismos.

Uno se basa simplemente en el tamaño. Si uno es más grande, entonces uno más pequeño es presumiblemente el buen socio. A partir de este punto, la célula más pequeña se llama macho y la más grande se llama hembra.

Ahora, las hembras podrían invertir en almacenamiento (y mayor tamaño) mientras que los machos invierten en números. Esta estrategia mejorará drásticamente la fertilización y también permitirá seleccionar mejores machos. Da lugar a células femeninas grandes e inmóviles y a numerosas células masculinas pequeñas y de rápido movimiento. Aquí las hembras se llaman ovocitos (u óvulos) y los machos, los espermatozoides.

El último paso también podrían ser los machos inmóviles, pero esto no es frecuente porque necesitarán la ayuda externa para la fertilización. Estas células masculinas inmóviles (esperma) existen en algas rojas, esponjas, crustáceos y plantas con flores.


Pregunta 1.
Rhodophyceae se llama alga roja debido al pigmento
(a) Fucoxantina
(b) Ficoeritrina
(c) Carotenoides
(d) Clorofila c

Respuesta: (b) Ficoeritrina
Explicación:
Los miembros de Rhodophyceae se denominan comúnmente algas rojas debido al predominio del pigmento rojo, r-ficoeritrina en su cuerpo.

Pregunta 2.
¿Cuál de los siguientes materiales vegetales es un absorbente de agua eficiente?
(a) Agar
(b) Celulosa
(c) Lignina
(d) Pectina

Pregunta 3.
En una planta monoica
(a) Los órganos sexuales masculinos y femeninos están en el mismo individuo
(b) Los gametos masculinos y femeninos son de dos tipos morfológicamente distintos
(c) Los órganos sexuales masculinos y femeninos están en diferentes individuos
(d) Todos los estambres se fusionan para formar una unidad

Respuesta: (a) Los órganos sexuales masculinos y femeninos están en el mismo individuo

Pregunta 4.
Las plantas vasculares sin semillas cuyos esporofitos son más grandes que sus gametofitos pequeños e independientes son
(a) Pteridofitas
(b) Angiospermas
(c) Gimnospermas
(d) Ninguno de estos

Pregunta 5.
¿Cuál de las siguientes es una hepática?
(a) Sphagnum
(b) Funaria
(c) Marchantia
(d) Polytrichum

Respuesta: (c) Marchantia
Explicación:
Marchantia es una hepática.
Sphagnum, Funaria y Polytrichum son musgos.

Pregunta 6.
Las plantas transgénicas son las
(a) Cultivado en medio artificial después de la hibridación en el campo.
(b) Producido por un embrión somático en medio artificial
(c) Generado mediante la introducción de ADN extraño en una célula y la regeneración de una planta a partir de esa célula.
(d) Producido después de la fusión de protoplastos en medio artificial

Respuesta: (c) Generado mediante la introducción de ADN extraño en una célula y la regeneración de una planta a partir de esa célula.

Pregunta 7.
¿Cuál de las siguientes plantas se usa ampliamente para el estudio de la fotosíntesis?
(a) Amaranto
(b) Espárragos
(c) Clorella
(d) Girasol

Pregunta 8.
¿Cuál de los siguientes se usa para cultivar microbios?
(a) Laminaria
(b) Gelidio
(c) Clorella
(d) Sargazo

Respuesta: (b) Gelidium
Explicación:
El agar se extrae de Gelidium y Gracilaria, se utiliza para cultivar microbios y en la preparación de helados y gelatinas.

Pregunta 9.
La condición isógama con gametos no flagelados se encuentra en
(a) Chlamydomonas
(b) Spirogyra
(c) Volvox
(d) Fucus

Pregunta 10.
Las gimnospermas no producen flores ni frutos porque no poseen
(a) Embrión
(b) Ovario
(c) Óvulo
(d) Semilla

Pregunta 11.
Rhodophyceae se llama alga roja debido al pigmento
(a) Fucoxantina
(b) Ficoeritrina
(c) Carotenoides
(d) Clorofila c

Respuesta: (b) Ficoeritrina
Explicación:
Los miembros de Rhodophyceae se denominan comúnmente algas rojas debido al predominio del pigmento rojo, r-ficoeritrina en su cuerpo.

Pregunta 12.
En musgo, los estomas aparecen en
(a) Cápsula
(b) Hojas
(c) Tallo
(d) Todos estos

Pregunta 13.
El gametofito no es una generación independiente y de vida libre en
(a) Pinus
(b) Polytrichum
(c) Adiantum
(d) Marchantia

Pregunta 14.
En las gimnospermas, el desarrollo de granos de polen ocurre en
(a) Strobili
(b) Microsporangia
(c) Megasporangia
(d) Macrosporangia

Respuesta: (b) Microsporangia
Explicación:
En las gimnospermas, el desarrollo de los granos de polen ocurre en la microsporangia.

Pregunta 15.
Los cloroplastos en forma de cinta se producen en
(a) Ulothrix
(b) Spirogyra
(c) Chlamydomonas
(d) Riccia

Pregunta 16.
Antheridia y Archegonia son órganos sexuales de
(a) Musgo
(b) Mucor
(c) Spirogyra
(d) Puccinia

Pregunta 17.
El yodo se encuentra en
(a) Spirogyra
(b) Laminaria
(c) Polisifonía
(d) Clorella

Pregunta 18.
Los briófitos se denominan anfibios del reino vegetal porque
(a) Estas plantas viven en el suelo y dependen de organismos marinos para la reproducción asexual.
(b) Estas plantas viven en el suelo y dependen del agua para la reproducción sexual.
(c) Estas plantas viven en el agua y dependen de los animales terrestres para su reproducción sexual.
(d) Estas plantas viven cerca de cuerpos de agua.

Respuesta: (b) Estas plantas viven en el suelo y dependen del agua para la reproducción sexual.
Explicación:
Los briófitos se denominan anfibios del reino vegetal porque viven en el suelo y dependen del agua para su reproducción sexual.
Suelen aparecer en zonas húmedas húmedas y sombreadas.

Pregunta 19.
¿Cuál de los siguientes es un criptograma vascular?
(a) Cedrus
(b) Equisetum
(c) Ginkgo
(d) Marchantia

Pregunta 20.
Pinus se diferencia del mango por tener
(a) Hábito del árbol
(b) Hojas verdes
(c) Óvulos no encerrados en el ovario
(d) Madera

Respuesta: (c) Los óvulos no encerrados en el ovario.

Esperamos que la descarga gratuita de NCERT MCQ Questions for Class 11 Biology Chapter 3 Plant Kingdom with Answers Pdf le ayude. Si tiene alguna consulta con respecto a las preguntas de opción múltiple con respuestas de las preguntas más frecuentes de la clase 11 de la biología del Reino de las plantas de CBSE, deje un comentario a continuación y nos comunicaremos con usted pronto.


¿Son diferentes el género y el sexo?

En un intento de usurpar el hecho biológico, los revolucionarios sexuales han tratado de separar género y sexo definiéndolos como dos aspectos separados de una persona. Un artículo reciente sobre este tema declaró: “El sexo es un rasgo biológico que está determinado por los cromosomas sexuales específicos. . . . El género, por otro lado, se define social, cultural y personalmente ”2.

Otro artículo dio una definición similar de sexo y luego declaró: “El concepto de género. . . es significativamente diferente del sexo biológico. La identidad de género es un sentimiento subjetivo de 'masculinidad' y 'feminidad' ”. 3 (O, si nos atenemos a las definiciones de género del blog de Tumblr, ¡tal vez algo completamente diferente!) Pero, ¿qué dicen los expertos médicos que escriben los diccionarios médicos?

Continúan definiendo género y sexo como sinónimos. La edición actual de Diccionario médico de Stedman define género como una "categoría a la que un individuo es asignado por sí mismo o por otros, sobre la base del sexo”(Énfasis mío). El sexo se define como "el carácter biológico o la cualidad que distingue al hombre y a la mujer" 4.

Diccionario médico ciclopédico de Taber define el género como "el sexo de un individuo (es decir, hombre o mujer)" y el sexo como "1. las características que diferencian a machos y hembras en la mayoría de plantas y animales. 2. Género ". 5 Está claro desde una perspectiva médica y científica que son lo mismo. Solo aquellos que desean hacer lo que es correcto a sus propios ojos (Jueces 21:25) quieren que estos términos sean distintivos para justificar su pecado.

La Palabra de Dios tampoco separa el género del sexo. Génesis 1:27 se refiere a la creación del hombre y la mujer (sexo), y en Génesis 2 leemos sobre la creación del hombre y la mujer (género) con más detalle. Pronombres masculinos y femeninos específicos (p. Ej., Ella ella, él es) se utilizan para vincular al hombre con el hombre y a la mujer con la mujer a lo largo del relato de la creación del Génesis. El sexo está directamente relacionado con el género. Además, después de que Dios terminó su creación, la declaró “muy buena” (Génesis 1:31). Entonces, el buen diseño de Dios es solo para dos géneros / sexos, y este diseño está confirmado por nuestra biología.


Información del libro

Descripción del libro

Este libro de texto fue creado para acompañar un curso de introducción a la biología del mismo nombre, sin embargo, esperamos atraer a cualquier lector interesado en aprender, en un ambiente libre e interactivo, los conceptos básicos de los siguientes temas de nivel introductorio: proceso de la ciencia, evolución , genética molecular, herencia, evolución del sexo, selección sexual y, finalmente, cómo se hacen los bebés. Un plan de estudios de laboratorio de 13 semanas acompaña al curso original en la Universidad de Minnesota. Los recursos de laboratorio están disponibles a través de los editores de Bluedoor en https://www.bluedoorpublishing.com/. A medida que continuamos desarrollando este recurso, agradecemos sus comentarios. -Sehoya y Deena

A menos que se indique lo contrario, ilustraciones originales de Windy Zheng.

Autores

Licencia

La evolución y biología del sexo de Sehoya Cotner y Deena Wassenberg está autorizada bajo una licencia internacional Creative Commons Reconocimiento-No comercial 4.0, salvo que se indique lo contrario.


43.3 Anatomía reproductiva humana y gametogénesis

Al final de esta sección, podrá hacer lo siguiente:

  • Describir las anatomías reproductivas masculinas y femeninas humanas.
  • Discutir la respuesta sexual humana
  • Describir la espermatogénesis y la ovogénesis y discutir sus diferencias y similitudes.

A medida que los animales se volvieron más complejos, se desarrollaron órganos y sistemas de órganos específicos para respaldar funciones específicas del organismo. Las estructuras reproductivas que evolucionaron en los animales terrestres permiten que machos y hembras se apareen, fertilicen internamente y apoyen el crecimiento y desarrollo de la descendencia.

Anatomía reproductiva humana

Los tejidos reproductivos de humanos masculinos y femeninos se desarrollan de manera similar en el útero hasta que se libere un nivel bajo de la hormona testosterona de las gónadas masculinas. La testosterona hace que los tejidos no desarrollados se diferencien en órganos sexuales masculinos. Cuando la testosterona está ausente, los tejidos se convierten en tejidos sexuales femeninos. Las gónadas primitivas se convierten en testículos u ovarios. Los tejidos que producen un pene en los hombres producen un clítoris en las mujeres. El tejido que se convertirá en el escroto en un hombre se convierte en los labios de una mujer, es decir, son estructuras homólogas.

Anatomía reproductiva masculina

En el sistema reproductor masculino, el escroto alberga los testículos o los testículos (singular: testículo), lo que incluye el paso de los vasos sanguíneos, los nervios y los músculos relacionados con la función testicular. Los testículos son un par de órganos reproductores masculinos que producen esperma y algunas hormonas reproductivas. Cada testículo mide aproximadamente 2,5 por 3,8 cm (1,5 por 1 pulgada) de tamaño y está dividido en lóbulos en forma de cuña por tejido conectivo llamado tabiques. Enroscados en cada cuña hay túbulos seminíferos que producen espermatozoides.

Los espermatozoides están inmóviles a la temperatura corporal, por lo tanto, el escroto y el pene están fuera del cuerpo, como se ilustra en la figura 43.8, de modo que se mantenga una temperatura adecuada para la motilidad. En los mamíferos terrestres, el par de testículos debe suspenderse fuera del cuerpo a aproximadamente 2 ° C por debajo de la temperatura corporal para producir espermatozoides viables. La infertilidad puede ocurrir en mamíferos terrestres cuando los testículos no descienden a través de la cavidad abdominal durante el desarrollo fetal.

Conexión visual

¿Cuál de las siguientes afirmaciones sobre el sistema reproductivo masculino es falsa?

  1. Los conductos deferentes transportan los espermatozoides desde los testículos hasta el pene.
  2. Los espermatozoides maduran en túbulos seminíferos en los testículos.
  3. Tanto la próstata como las glándulas bulbouretrales producen componentes del semen.
  4. La glándula prostática se encuentra en los testículos.

Los espermatozoides maduran en túbulos seminíferos que se enrollan dentro de los testículos, como se ilustra en la figura 43.8. Las paredes de los túbulos seminíferos están formadas por los espermatozoides en desarrollo, con los espermatozoides menos desarrollados en la periferia del túbulo y los espermatozoides completamente desarrollados en la luz. Los espermatozoides se mezclan con células "nodrizas" llamadas células de Sertoli que protegen las células germinales y promueven su desarrollo. Otras células mezcladas en la pared de los túbulos son las células intersticiales de Leydig. Estas células producen altos niveles de testosterona una vez que el hombre llega a la adolescencia.

Cuando los espermatozoides han desarrollado flagelos y están casi maduros, abandonan los testículos y entran en el epidídimo, como se muestra en la figura 43.8. Esta estructura se asemeja a una coma y se encuentra a lo largo de la parte superior y posterior de los testículos; es el sitio de maduración de los espermatozoides. Los espermatozoides salen del epidídimo y entran en los conductos deferentes (o ductus deferens), que transportan los espermatozoides, detrás de la vejiga, y forman el conducto eyaculatorio con el conducto de las vesículas seminales. Durante una vasectomía, se extrae una sección de los conductos deferentes, lo que evita que los espermatozoides salgan del cuerpo durante la eyaculación y previene la fertilización.

El semen es una mezcla de espermatozoides y secreciones de los conductos espermáticos (alrededor del 10 por ciento del total) y fluidos de las glándulas accesorias que contribuyen con la mayor parte del volumen del semen. Los espermatozoides son células haploides, que consisten en un flagelo como cola, un cuello que contiene las mitocondrias productoras de energía de la célula y una cabeza que contiene el material genético. La figura 43.9 muestra una micrografía de esperma humano, así como un diagrama de las partes del esperma. Un acrosoma se encuentra en la parte superior de la cabeza de los espermatozoides. Esta estructura contiene enzimas lisosomales que pueden digerir las cubiertas protectoras que rodean al óvulo para ayudar a que el esperma penetre y fertilice el óvulo. Un eyaculado contendrá de dos a cinco mililitros de líquido con 50-120 millones de espermatozoides por mililitro.

La mayor parte del semen proviene de las glándulas accesorias asociadas con el sistema reproductor masculino. Estas son las vesículas seminales, la glándula prostática y la glándula bulbouretral, todas las cuales se ilustran en la figura 43.8. Las vesículas seminales son un par de glándulas que se encuentran a lo largo del borde posterior de la vejiga urinaria. Las glándulas producen una solución espesa, amarillenta y alcalina. Como los espermatozoides solo son móviles en un ambiente alcalino, un pH básico es importante para revertir la acidez del ambiente vaginal. La solución también contiene moco, fructosa (un nutriente mitocondrial de los espermatozoides), una enzima coagulante, ácido ascórbico y hormonas de acción local llamadas prostaglandinas. Las glándulas de las vesículas seminales representan el 60 por ciento del volumen del semen.

El pene, ilustrado en la figura 43.8, es un órgano que drena la orina de la vejiga renal y funciona como un órgano copulador durante el coito. El pene contiene tres tubos de tejido eréctil que recorren todo el órgano. Estos consisten en un par de tubos en el lado dorsal, llamado cuerpo cavernoso, y un solo tubo de tejido en el lado ventral, llamado cuerpo esponjoso. Este tejido se llenará de sangre, se pondrá erecto y duro, en preparación para el coito. El órgano se inserta en la vagina culminando con una eyaculación. Durante el coito, los esfínteres del músculo liso en la abertura de la vejiga renal se cierran y evitan que la orina ingrese al pene. Un orgasmo es un proceso de dos etapas: primero, las glándulas y los órganos accesorios conectados a los testículos se contraen, luego el semen (que contiene espermatozoides) es expulsado a través de la uretra durante la eyaculación. Después del coito, la sangre sale del tejido eréctil y el pene se vuelve flácido.

La glándula prostática con forma de nuez rodea la uretra, la conexión con la vejiga urinaria. Tiene una serie de conductos cortos que se conectan directamente a la uretra. La glándula es una mezcla de músculo liso y tejido glandular. El músculo proporciona gran parte de la fuerza necesaria para que se produzca la eyaculación. El tejido glandular produce un líquido lechoso y delgado que contiene citrato (un nutriente), enzimas y antígeno prostático específico (PSA). El PSA es una enzima proteolítica que ayuda a licuar la eyaculación varios minutos después de la liberación del macho. Las secreciones de la glándula prostática representan aproximadamente el 30 por ciento del volumen del semen.

La glándula bulbouretral, o glándula de Cowper, libera su secreción antes de la liberación de la mayor parte del semen. Neutraliza cualquier residuo ácido en la uretra que quede de la orina. Esto generalmente representa un par de gotas de líquido en la eyaculación total y puede contener algunos espermatozoides. Es posible que la extracción del pene de la vagina antes de la eyaculación para prevenir el embarazo no funcione si hay espermatozoides en las secreciones de la glándula bulbouretral. La ubicación y las funciones de los órganos reproductores masculinos se resumen en la tabla 43.1.

Organo Localización Función
Escroto Externo Llevar y sostener los testículos
Pene Externo Entrega orina, órgano copulante
Testículos Interno Produce esperma y hormonas masculinas.
Vesículas seminales Interno Contribuir a la producción de semen
Próstata Interno Contribuir a la producción de semen
Glándulas bulbouretrales Interno Limpiar la uretra en la eyaculación.

Anatomía reproductiva femenina

Varias estructuras reproductivas son exteriores al cuerpo de la mujer. Estos incluyen los senos y la vulva, que consta de mons pubis, clítoris, labios mayores, labios menores y glándulas vestibulares, todos ilustrados en la figura 43.10. La ubicación y las funciones de los órganos reproductores femeninos se resumen en la Tabla 43.2. La vulva es un área asociada con el vestíbulo que incluye las estructuras que se encuentran en el área inguinal (ingle) de las mujeres. El monte del pubis es un área redonda y grasa que recubre la sínfisis púbica. El clítoris es una estructura con tejido eréctil que contiene una gran cantidad de nervios sensoriales y sirve como fuente de estimulación durante el coito. Los labios mayores son un par de pliegues alargados de tejido que se extienden por detrás del mons pubis y encierran los otros componentes de la vulva. Los labios mayores se derivan del mismo tejido que produce el escroto en un hombre. Los labios menores son pliegues delgados de tejido ubicados centralmente dentro de los labios mayores. Estos labios protegen las aberturas de la vagina y la uretra. El monte pubis y la porción anterior de los labios mayores se cubren de pelo durante la adolescencia, los labios menores son lampiños. Las glándulas vestibulares mayores se encuentran a los lados de la abertura vaginal y proporcionan lubricación durante el coito.

Organo Localización Función
Clítoris Externo Órgano sensorial
monte de Venus Externo Área grasa que recubre el hueso púbico
Labios mayores Externo Cubre labios menores
Labios menores Externo Cubre vestíbulo
Glándulas vestibulares mayores Externo Secretar moco lubricar la vagina
Pechos Externo Producir y entregar leche
Ovarios Interno Llevar y desarrollar huevos.
Oviductos (trompas de Falopio) Interno Transportar el óvulo al útero
Útero Interno Apoyar el desarrollo del embrión
Vagina Interno Tubo común para el coito, canal de parto, flujo menstrual

Los senos están formados por glándulas mamarias y grasa. El tamaño de la mama está determinado por la cantidad de grasa depositada detrás de la glándula. Cada glándula consta de 15 a 25 lóbulos que tienen conductos que se vacían en el pezón y que suministran al niño lactante leche rica en nutrientes y anticuerpos para ayudar al desarrollo y proteger al niño.

Las estructuras reproductivas internas de la mujer incluyen los ovarios, los oviductos, el útero y la vagina, que se muestran en la figura 43.10. El par de ovarios se mantiene en su lugar en la cavidad abdominal mediante un sistema de ligamentos. Los ovarios constan de una médula y una corteza: la médula contiene nervios y vasos sanguíneos para suministrar nutrientes a la corteza y eliminar los desechos. Las capas externas de células de la corteza son las partes funcionales de los ovarios. La corteza está formada por células foliculares que rodean los óvulos que se desarrollan durante el desarrollo fetal. en el útero. Durante el período menstrual, un lote de células foliculares se desarrolla y prepara los óvulos para su liberación. En el momento de la ovulación, se rompe un folículo y se libera un óvulo, como se ilustra en la figura 43.11a.

Los oviductos, o trompas de Falopio, se extienden desde el útero en la cavidad abdominal inferior hasta los ovarios, pero no están en contacto con los ovarios. Los extremos laterales de los oviductos se ensanchan en una estructura similar a una trompeta y tienen una franja de proyecciones en forma de dedos llamadas fimbrias, ilustradas en la figura 43.10b. Cuando se libera un óvulo durante la ovulación, las fimbras ayudan al óvulo inmóvil a entrar en la trompa y pasar al útero. Las paredes de los oviductos son ciliadas y están formadas principalmente por músculo liso. Los cilios laten hacia el centro y el músculo liso se contrae en la misma dirección, moviendo el óvulo hacia el útero. La fertilización generalmente tiene lugar dentro de los oviductos y el embrión en desarrollo se mueve hacia el útero para su desarrollo. Por lo general, el óvulo o el embrión tarda una semana en viajar a través del oviducto. La esterilización en mujeres se llama ligadura de trompas; es análoga a la vasectomía en hombres en que los oviductos se cortan y sellan.

El útero es una estructura del tamaño del puño de una mujer. Este está revestido con un endometrio rico en vasos sanguíneos y glándulas mucosas. El útero sostiene al embrión y al feto en desarrollo durante la gestación. La porción más gruesa de la pared del útero está formada por músculo liso. Las contracciones del músculo liso del útero ayudan a que el bebé pase por la vagina durante el trabajo de parto. Una parte del revestimiento del útero se desprende durante cada período menstrual y luego se acumula nuevamente en preparación para una implantación. Parte del útero, llamado cuello uterino, sobresale hacia la parte superior de la vagina. El cuello uterino funciona como canal de parto.

La vagina es un tubo muscular que sirve para varios propósitos. Permite que el flujo menstrual salga del cuerpo. Es el receptáculo del pene durante el coito y el recipiente para el parto de la descendencia. Está revestido por células epiteliales escamosas estratificadas para proteger el tejido subyacente.

Respuesta sexual durante el coito

La respuesta sexual en los seres humanos es tanto psicológica como fisiológica. Ambos sexos experimentan la excitación sexual a través de la estimulación psicológica y física. Hay cuatro fases de la respuesta sexual. Durante la fase uno, llamada excitación, la vasodilatación provoca vasocongestión en los tejidos eréctiles tanto en hombres como en mujeres. Los pezones, el clítoris, los labios vaginales y el pene se llenan de sangre y se agrandan. Las secreciones vaginales se liberan para lubricar la vagina y facilitar las relaciones sexuales. Durante la segunda fase, llamada meseta, la estimulación continúa, el tercio exterior de la pared vaginal se agranda con la sangre y la respiración y la frecuencia cardíaca aumentan.

Durante la fase tres, o el orgasmo, se producen contracciones rítmicas e involuntarias de los músculos en ambos sexos. En el macho, las glándulas accesorias y los túbulos reproductivos se contraen colocando el semen en la uretra, luego la uretra se contrae expulsando el semen a través del pene. En las mujeres, el útero y los músculos vaginales se contraen en ondas que pueden durar un poco menos de un segundo cada una. Durante la fase cuatro, o resolución, los procesos descritos en las tres primeras fases se invierten y vuelven a su estado normal. Los hombres experimentan un período refractario en el que no pueden mantener una erección o eyacular durante un período de tiempo que varía de minutos a horas.

Gametogénesis (espermatogénesis y ovogénesis)

La gametogénesis, la producción de espermatozoides y óvulos, se lleva a cabo mediante el proceso de meiosis. Durante la meiosis, dos divisiones celulares separan los cromosomas emparejados en el núcleo y luego separan las cromátidas que se produjeron durante una etapa anterior del ciclo de vida de la célula. La meiosis produce células haploides con la mitad de cada par de cromosomas que normalmente se encuentran en las células diploides. La producción de esperma se llama espermatogénesis y la producción de óvulos se llama ovogénesis.

Espermatogénesis

La espermatogénesis, ilustrada en la figura 43.12, ocurre en la pared de los túbulos seminíferos (figura 43.8), con células madre en la periferia del tubo y los espermatozoides en la luz del tubo. Inmediatamente debajo de la cápsula del túbulo hay células diploides indiferenciadas. Estas células madre, llamadas espermatogonias (singular: spermatagonium), atraviesan la mitosis con una descendencia que se diferencia en un espermatozoide y la otra da lugar a la siguiente generación de espermatozoides.

La meiosis comienza con una célula llamada espermatocito primario. Al final de la primera división meiótica, se produce una célula haploide llamada espermatocito secundario. Esta célula es haploide y debe pasar por otra división celular meiótica. La célula producida al final de la meiosis se llama espermátide y cuando alcanza la luz del túbulo y crece un flagelo, se llama espermatozoide. Cuatro espermatozoides resultan de cada espermatocito primario que pasa por la meiosis.

Las células madre se depositan durante la gestación y están presentes desde el nacimiento hasta el comienzo de la adolescencia, pero en un estado inactivo. Durante la adolescencia, las hormonas gonadotrópicas de la pituitaria anterior provocan la activación de estas células y la producción de espermatozoides viables. Esto continúa hasta la vejez.

Enlace al aprendizaje

Visite este sitio para ver el proceso de espermatogénesis.

Ovogénesis

La ovogénesis, ilustrada en la figura 43.13, ocurre en las capas más externas de los ovarios. Al igual que con la producción de espermatozoides, la ovogénesis comienza con una célula germinal, llamada oogonium (plural: oogonia), pero esta célula sufre mitosis para aumentar en número, lo que eventualmente da como resultado hasta alrededor de uno a dos millones de células en el embrión.

La meiosis inicial de la célula se denomina ovocito primario, como se muestra en la figura 43.13. Esta célula iniciará la primera división meiótica y se detendrá en su progreso en la primera etapa de profase. En el momento del nacimiento, todos los huevos futuros se encuentran en la etapa de profase. En la adolescencia, las hormonas de la hipófisis anterior provocan el desarrollo de varios folículos en un ovario. Esto da como resultado que el ovocito primario termine la primera división meiótica. La célula se divide de manera desigual, la mayor parte del material celular y los orgánulos van a una célula, llamada ovocito secundario, y solo un conjunto de cromosomas y una pequeña cantidad de citoplasma van a la otra célula. Esta segunda célula se llama cuerpo polar y generalmente muere. Se produce una parada meiótica secundaria, esta vez en la etapa de metafase II. En la ovulación, este ovocito secundario se liberará y viajará hacia el útero a través del oviducto. Si se fertiliza el ovocito secundario, la célula continúa a través de la meiosis II, produciendo un segundo cuerpo polar y un óvulo fertilizado que contiene los 46 cromosomas de un ser humano, la mitad de ellos provenientes del esperma.

La producción de óvulos comienza antes del nacimiento, se detiene durante la meiosis hasta la pubertad y luego las células individuales continúan en cada ciclo menstrual. Se produce un huevo de cada proceso meiótico, y los cromosomas y cromátidas adicionales van a los cuerpos polares que se degeneran y son reabsorbidos por el cuerpo.

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    • Autores: Mary Ann Clark, Matthew Douglas, Jung Choi
    • Editor / sitio web: OpenStax
    • Título del libro: Biología 2e
    • Fecha de publicación: 28 de marzo de 2018
    • Ubicación: Houston, Texas
    • URL del libro: https://openstax.org/books/biology-2e/pages/1-introduction
    • URL de la sección: https://openstax.org/books/biology-2e/pages/43-3-human-reproductive-anatomy-and-gametogenesis

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    Ejemplo de un mensaje

    Tomemos & rsquos el caso de alguien nacido el 12 de marzo de 1989 y su pareja nacida el 14 de julio de 1992. Su resultado es:

    ■ Su signo del zodíaco es Piscis, mientras que su signo del zodíaco es Cáncer. ¡Estos dos signos de agua son una fuerte combinación! Dos seres humanos sensibles con una perspectiva intuitiva de todas las cosas. O son la pareja más sensible o un drama permanente. Ser tan parecidos desencadena la mejor comprensión o una discusión continua. Depende de estos dos cuánto están interesados ​​en hacer que las cosas funcionen.

    ■ Pero si nos fijamos en la compatibilidad del zodíaco chino: su signo del zodíaco chino es la serpiente. Su signo del zodíaco chino de pareja y rsquos es el Mono. La combinación entre Snake y Monkey se considera una de las mejores combinaciones posibles.


    Más que biología

    En el primer capítulo de la Biblia, Dios crea los cielos y la tierra y llena la tierra de seres vivientes. La corona de la creación es Adán, o el hombre (humanidad). Y entre todas las diversas características humanas, Dios destaca una en particular: masculina y femenina.

    Génesis 1:27 transmite una conexión innegable entre "la imagen de Dios" y las categorías ontológicas de hombre y mujer. Este verso consta de tres líneas de poesía, con la segunda y tercera líneas estructuradas en paralelo, comunicando una correlación entre la imagen de Dios y "masculino y femenino".

    Y creó Dios al hombre a su imagen,
    a imagen de Dios lo creó
    varón y hembra los creó.

    Ser creado a imagen de Dios y ser hombre o mujer es esencial para ser humano. El sexo (masculino y femenino) no es simplemente biológico o genético, al igual que ser humano no es simplemente biológico o genético. El sexo es ante todo una realidad espiritual y ontológica creada por Dios. Ser hombre o mujer no puede ser cambiado por manos humanas, el sexo es una categoría de la obra de Dios, su diseño original y eterno.

    Por mucho que alguien intente alterar este hecho en su propio cuerpo, lo máximo que se puede hacer es eliminar o aumentar artificialmente partes del cuerpo, o usar productos farmacéuticos para suprimir de manera antinatural la realidad biológica y hormonal de la propia esencia como hombre o mujer. . En otras palabras, la psicología usurpa la biología. lo que siento se convierte en quien soy. Al negar esta realidad física y genética, permitimos que la experiencia supere la esencia y, lo que es más importante, la imagen de Dios.


    Resultados

    El sexo modifica el impacto de la HT en el peso corporal, el consumo de alimentos y agua, la temperatura corporal y la frecuencia cardíaca en estado hiper e hipotiroideo

    Los ratones machos mostraron un peso corporal (BW) significativamente mayor en comparación con las hembras en condiciones eutiroideas e hipertiroideas (Fig. 2a, b). Para los ratones eutiroideos, el mayor ΔBW se observó en la semana 9, metro & lt 16,5% y F & lt5,9% (F (17,252) = 9.003, pag & lt 0,0001 para efecto de tiempo y F (1,252) = 67.18, pag & lt 0,0001 para el efecto sexual, interacción: F (17,252) = 4.065, pag & lt 0,0001). De manera similar, para los ratones hipertiroideos, el mayor ΔBW se observó en la semana 9, metro & lt 29,6% frente a F & lt 16,5% (F (17,252) = 33.43, pag & lt 0,0001 para efecto de tiempo y F (1,252) = 88.28, pag & lt 0,0001 para efecto sexual, interacción F (17,252) = 3.966, pag & lt 0,0001). Por el contrario, la diferencia de sexo en el aumento de peso corporal desapareció en el hipotiroidismo, excepto en momentos puntuales en las semanas 3, 5 y 9 (el ΔBW más alto metro

    0,7% en la semana 9, F (17,252) = 2.055, pag = 0,0093 para el efecto de tiempo y F (1,252) = 52.98, pag & lt 0,0001 para el efecto sexual sin interacción F (17,252) = 1.614, pag = 0,0605, figura 2c).

    Cambio de peso corporal, ingesta de alimentos y agua en eutiroides, T4 o LoI / MMI / ClO4 - ratones tratados. Evolución temporal del peso corporal medio (BW) de ratones machos y hembras durante un período experimental de 9 semanas bajo a control, B T4, y C LoI / MMI / ClO4 - tratamiento. La ingesta promedio de alimentos se relacionó con el peso corporal durante el experimento en D eutiroide mi hipertiroidismo y F condiciones de hipotiroidismo en ratones de ambos sexos. Después del período de rodaje, los ratones fueron sometidos a una dieta baja en yodo para la inducción del hipotiroidismo, o una dieta de control con yodo por parte del mismo proveedor para adaptar la ingesta nutricional (grupos eutiroideos e hipertiroideos). Flechas indicar el inicio del tratamiento. El curso temporal de la ingesta media de agua se controló durante el período experimental de 9 semanas bajo gramo control, h TH exceso, y I Privación de TH de ratones machos y hembras. Los datos se presentan como media ± DE, norte = 8 animals/sex/treatment/time point two-way ANOVA followed by the Bonferroni post hoc analysis applied for time and sex effects, *pag < 0.05, **pag < 0.01, ***pag < 0.001 above graph represent multiple-testing results

    Euthyroid female mice consumed more food (metro

    5 g/g BW*40 g) and water (metro

    6 ml/g BW*40 g) than male mice (Fig. 2d, g food intake: F (8,126) = 61.77, pag < 0.0001 for time effect and F (1,126) = 121.7, pag < 0.0001 for sex effect, interaction: F (8,126) = 3.469, pag = 0.0012 water intake: F (8,126) = 31.92, pag < 0.0001 for time effect and F (1,126) = 385.3, pag < 0.0001 for sex effect, interaction: F (8,126) = 3.342, pag = 0.0017). T4 administration enhanced food (metro

    6.5 g/g BW*40 g) and water intake (metro

    7.5 ml/g BW*40 g) in both sexes, again significantly more pronounced in female mice (Fig. 2e, h food intake: F (8,126) = 11.56, pag < 0.0001 for time effect and F (1,126) = 78.90, pag < 0.0001 for sex effect, interaction: F (8,126) = 5.721, pag < 0.0001, water intake: F (8,126) = 7.898, pag < 0.0001 for time effect and F (1,126) = 90.29, pag < 0.0001 for sex effect, interaction: F (8,126) = 3.170, pag = 0.0026). Hypothyroidism abolished sex difference in food intake (metro

    4.8 g/g BW*40 g, F (8,126) = 9.004, pag < 0.0001 for time effect and F (1,126) = 15.25, pag = 0.0002 for sex effect, interaction: F (8,126) = 9.393, pag < 0.0001, Fig. 2f) and reversed sex difference in water consumption with female mice showing significantly less water intake (metro

    4 ml/g BW*40 g, F (8,126) = 13.55, pag < 0.0001 for time effect and F (1,126) = 90.96, pag < 0.0001 for sex effect, interaction: F (8,126) = 34.92, pag < 0.0001, Fig. 2i).

    Body temperature, measured by a rectal probe, was higher in euthyroid female compared to male mice (metro

    38.2 °C, pag < 0.05). This sex difference persisted during T4 administration (metro

    38.8 °C, pag < 0.05, F (1,28) = 21.23, pag < 0.0001 for sex effect, F (1,28) = 16.50, pag = 0.0004 for treatment effect and F (1,28) = 0.04857, pag = 0.8272 for interaction) and LoI/MMI/ClO4 − treatment (metro

    38.2 °C, pag < 0.01, F (1,28) = 25.77, pag < 0.0001 for sex effect, F (1,28) = 0.9667, pag = 0.3339 for treatment effect, and F (1,28) = 0.7794, pag = 0.3848 for interaction, Fig. 3a). Interestingly, a drop in body temperature was only observed in male but not female hypothyroid mice compared to euthyroid controls.

    Influence of sex and change of TH serum concentrations on body temperature and heart rate. a Body temperature was assessed by rectal temperature measurements and B non-invasive ECG was performed on conscious mice of both sexes under euthyroid, hyperthyroid, and hypothyroid conditions. Data are presented as mean ± SD, norte = 8 animals/sex/treatment two-way ANOVA followed by the Bonferroni post hoc analysis applied for treatment and sex effects, *pag < 0.05, **pag < 0.01, ***pag < 0.001 above bars represent multiple-testing results

    Non-invasive ECG measurements were performed to investigate the influence of TH on heart rate (HR). Euthyroid female animals showed higher HR than male mice (metro

    738 bpm, pag < 0.05). Sex difference in HR disappeared with TH excess (metro

    782 bpm, F (1,28) = 5.837, pag = 0.0225 for sex effect, F (1,28) = 32.65, pag < 0.0001 for treatment effect, and F (1,28) = 1.306, pag = 0.2628 for interaction) or deprivation (metro

    577 bpm, F (1,28) = 5.586, pag = 0.0253 for sex effect, F (1,28) = 227.2, pag < 0.0001 for treatment effect, and F (1,28) = 1.099, pag = 0.3034 for interaction, Fig. 3b).

    Male mice show pronounced impairment of muscle function and coordination while female mice exhibit increased activity under TH excess

    Muscle strength, tonus, and coordination of movements were examined by the chimney test. In general, female mice showed better performance in climbing up the tube than male mice (metro

    7.4 s, Fig. 4a). Hyper- and hypothyroidism resulted in decrease of muscle strength and coordination in female, but even more strikingly in male mice (metro

    27.11 s, pag < 0.001, F (1,28) = 23.94, pag < 0.0001 for sex effect, F (1,28) = 24.66, pag < 0.0001 for treatment effect, and F (1,28) = 5.266, pag = 0.0294 for interaction (hyper) and metro

    9.97 s, pag < 0.05, F (1,28) = 19.23, pag = 0.0001 for sex effect, F (1,28) = 5.3, pag = 0.029 for treatment effect, and F (1,28) = 3.923, pag = 0.0575 for interaction (hypo)). Of note, performance in the chimney test was more impaired under TH excess than TH deprivation.

    Behavioural assessment of male and female mice under T4 excess or deprivation. The chimney test was used to a examine muscle strength, tonus, and coordination of movements in male and female mice under euthyroid, hyperthyroid, or hypothyroid conditions. The open field was used to investigate activity and exploratory behaviour. B Total distance travelled was measured to assess activity, and C frequency of rearings was determined to assess exploratory behaviour. The rotarod test was used for an overall assessment of coordination and motor function in male and female mice before the start of treatment (training period) and under sham (D), T4 (mi), or LoI/MMI/ClO4 − (F) treatment. Data are presented as mean ± SD, norte = 8 animals/sex/treatment two-way ANOVA followed by the Bonferroni post hoc analysis applied for sex and treatment effects of aC and unpaired Student’s t test for sex effect of DF, *pag < 0.05, **pag < 0.01, ***pag < 0.001 represent multiple-testing or t test results

    To investigate changes in activity and exploration behavior, an open field test was used. Overall activity was measured by total distance travelled, while exploration was quantified by the frequency of rearing events. Control animals showed no sex difference in open field parameters. Interestingly, T4 excess resulted in increased activity and exploratory behaviour only in female mice (metro Δ

    1243.2 cm, pag < 0.001 and metro Δ

    16.6 counts, pag = 0.05), whereas LoI/MMI/ClO4 − treatment led to a decreased activity in male mice only (metro Δ

    227.2 cm, pag < 0.01, Fig. 4b, c). Sex effect under hyperthyroidism was not significant (F (1,28) = 3.164, pag = 0.0861 for activity, F (1,28) = 0.6493, pag = 0.4272 for exploratory behaviour), but treatment effect reached statistical significance (F (1,28) = 7.6, pag = 0.0102 for activity and F (1,28) = 10.60, pag = 0.0030 for exploratory behaviour). Their interaction was significant for activity (F (1,28) = 17.64, pag = 0.0002), but not for exploratory behaviour (F (1,28) = 1.064, pag = 0.3112). While under hypothyroidism, no sex effect was found (F (1,28) = 0.9943, pag = 0.3272 for activity and F (1,28) = 0.8467, pag = 0.3654 for exploratory behaviour), treatment effect was significant (F (1,28) = 12.86, pag = 0.0013 for activity and F (1,28) = 9.231, pag = 0.0051 for exploratory behaviour). Furthermore, we found an interaction between sex and treatment on exploratory behaviour (F (1,28) = 8.406, pag = 0.0072), but not on activity (F (1,28) = 4.033, pag = 0.0544).

    In contrast to these sex-specific modulations of TH impact on behaviour, no sex differences were noted for male and female mice on the rotarod test under eu-, hyper-, and hypothyroid conditions (Fig. 4d–f).

    Sex influences on serum thyroid function status in hyperthyroidism and liver function in hypothyroidism

    Serum TT4, fT4, and fT3 concentrations did not differ between euthyroid male and female mice (Fig. 5a–c). TSH serum concentrations of euthyroid male and female mice were 310 ± 170 mU/l and 290 ± 30 mU/l, respectively (±SEM, norte = 4). T4 treatment resulted in marked sex differences in serum T4 and T3 status with 2.3-fold higher TT4 and fT4 concentrations in hyperthyroid females compared to male mice (Fig. 5a–c) and TSH concentrations below detection limit (<10 mU/l) in both sexes. LoI/MMI/ClO4 − treatment reduced TT4 concentrations below assay detection limit (<0.5 μg/dl) in both sexes (Fig. 5a–c) and increased TSH to 6830 ± 1070 mU/l and 7790 ± 1270 mU/l in male and female mice, respectively (±SEM, norte = 4). Sex effects on TH serum parameters were observed for TT4 and fT4 under hyperthyroidism (TT4: F (1,28) = 20.50, pag = 0.0001 fT4: F (1,28) = 10.80, pag = 0.0027) but not for hypothyroidism (TT4: F (1,28) = 0.09858, fT4: pag = 0.7559 F (1,28) = 0.2127, pag = 0.6482) and not for fT3 (hyperthyroid: F (1,28) = 2.485, pag = 0.1261 hypothyroid: F (1,28) = 0.1553, pag = 0.6965). Treatment effects had an impact on TT4 concentrations (hyperthyroid: F (1,28) = 95.74, pag < 0.0001 hypothyroid: F (1,28) = 165.8, pag < 0.0001) and on fT4 and fT3 concentrations under hyperthyroidism (fT4: F (1,28) = 41.32, pag < 0.0001 fT3: F (1,28) = 5.26, pag < 0.0001). No treatment impact was observed under hypothyroidism for fT4 and fT3 (fT4: F (1,28) = 2.316, pag = 0.1393 fT3: F (1,28) = 0.1645, pag = 0.6882). Interaction of TH status and sex was found for TT4 and fT4 under hyperthyroidism (TT4: F (1,28) = 21.26, pag < 0.0001 fT4: F (1,28) = 10.75, pag = 0.0028) but not under hypothyroidism (TT4: F (1,28) = 0.1272, pag = 0.7241 fT4: F (1,28) = 0.2350, pag = 0.6316) and not for fT3 (hyperthyroid: F (1,28) = 3.658, pag = 0.0661 hypothyroid: F (1,28) = 0.8460, pag = 0.3656).

    Serum TH status in euthyroid controls, T4 or LoI/MMI/ClO4 − treated male and female mice. a Total thyroxine (TT4), B free thyroxine (fT4), and C free triiodothyronine (fT3) concentrations were determined in sera by ELISA after 7 weeks of treatment. D Total cholesterol and mi triglyceride serum concentrations were determined by ELISA at the end of experiment in sera of euthyroid, hyperthyroid, and hypothyroid mice of both sexes. Data are presented as mean ± SD, norte = 8 animals/sex/treatment for TH concentrations, norte = 4/sex/treatment animals for total cholesterol and triglyceride concentrations two-way ANOVA followed by the Bonferroni post hoc analysis applied for sex and treatment effects, *pag < 0.05, **pag < 0.01, ***pag < 0.001 above bars represent multiple-testing results

    To examine the influence of sex on TH-dependent liver function, liver parameters were analyzed in sera collected at the end of treatment. While no changes were found in aspartate aminotransferase, creatine kinase, cholinesterase, and albumin serum concentrations (data not shown), a marked sex difference was found for total cholesterol (CHO) and triglyceride (TG) concentrations. Male mice exhibited higher CHO concentrations compared to female mice in the euthyroid state, and hypothyroidism led to significantly larger increases in serum CHO concentrations in male compared to female mice (metro Δ

    63.9 mg/dl). In contrast, T4 treatment decreased total CHO concentrations in both sexes (metro Δ

    63.1 mg/dl). Thus, sex difference in serum CHO levels disappeared during TH excess (F (1,12) = 1.530, pag = 0.2397), while deprivation led to an exaggeration (F (1,12) = 35.44, pag < 0.0001) (Fig. 5d). The treatment effect (F (1,12) = 57.23, pag < 0.0001 for hyperthyroidism and F (1,12) = 54.66, pag < 0.0001 for hypothyroidism) was considered significant and interacted with the sex effect (F (1,12) = 3.799, pag = 0.0075 for hyperthyroidism and F (1,12) = 16.96, pag = 0.0014 for hypothyroidism). Serum TG concentrations were not different in euthyroid males and females, but increased in hyperthyroid female mice only (metro Δ

    0.198 mg/ml, F (1,12) = 0.08541, pag = 0.7751). However, a sex difference appeared by TH modulation and was exaggerated by LoI/MMI/ClO4 − treatment (metro 0.288 mg/ml vs F 0.186 mg/ml, pag < 0.05, F (1,12) = 15.77, pag = 0.0019) (Fig. 5e). The treatment effect was considered significant for hyperthyroidism (F (1,12) = 20.98, pag = 0.0006) and interacted with sex effect (F (1,12) = 10.23, pag = 0.0076), but not for hypothyroidism (F (1,12) = 3.983, pag = 0.0692 F (1,12) = 0.3958, pag = 0.5410 for interaction).

    Evidence for a distinct impact of sex on cellular TH effects on gene expression in target organs brown adipose tissue, heart, and liver

    Expression of TH-responsive genes and TH transporters was studied by quantitative RT-PCR in BAT, heart, and liver of male and female mice under T4 excess, TH deprivation, and euthyroid conditions (Fig. 6a–i). A distinct and organ-specific pattern of sex variation in gene expression was observed. In brown adipose tissue, marked sex-specific alterations in Dio2 transcript levels were detected in hyperthyroid (upregulation in male, downregulation in female mice) and for Lat2 in hyper- and hypothyroid animals (Fig. 6a, b). Additionally, sex-dependent variation was found for expression of all investigated target genes and TH transporters in euthyroid mice (Fig. 6c). In contrast to this data, very little or no sex impact was found on target gene or TH transporter gene expression in heart neither in euthyroid controls nor in response to T4 or LoI/MMI/ClO4 − treatment (Fig. 6d–f). In fact, for most investigated genes, a distinctly higher expression was found in heart tissue of male mice irrespective of thyroid function status. In line with the contribution of liver and BAT to metabolic features of thyroid dysfunction, significant sex-specific alterations for, e.g., Dio1, Tbg, y Me1 as well as Mct10 y Lat1 expression were obvious with the manipulation of thyroid status (Fig. 6g–h), while livers of male and female euthyroid control mice showed little sex variation in target gene and TH transporter expression (Fig. 6i).

    TH effects in brown adipose tissue (BAT), heart, and liver of male and female mice. Fold changes of representative TH-responsive genes were measured by quantitative RT-PCR in a BAT, D heart, and gramo liver tissue of hyperthyroid or hypothyroid mice of both sexes and normalized to tissue samples of euthyroid control mice. For BAT Dio2, Ucp1, y PGC1α expression for heart Dio2, Myh6, y Hcn4 expression and for liver Dio1, Tbg, y Me1 expression were quantified. Additionally, mRNA expression of TH transporter genes were analyzed in B BAT, mi heart, and h liver. For BAT: Mct8, Mct10, Oatp3a1, Lat2, for heart: Mct8, Ntcp, Lat1, Lat2, and for liver: Mct8, Mct10, Lat1, Lat2. Furthermore, euthyroid sex comparison was analyzed in C BAT, F heart, and I liver of all genes, and gene expression in female tissues was normalized to male samples. Data are presented as mean ± SD, norte = 5–7 animals/sex/treatment unpaired Student’s t test, *pag < 0.05, **pag < 0.01, ***pag < 0.001 represent t test results


    Gender Probability: Male and Female Chromosomes

    There&rsquos about to be a baby boom! In this experiment, you&rsquoll draw marbles from two different cups to create a really big pretend family of boys and girls.

    How did you become a boy or a girl? It happened because of your chromosomes. Chromosomes are the instructions inside each of us. They give us our hair color, our eye color, and the other characteristics that our bodies have. They also determine whether we&rsquoll be born a boy or a girl.

    Men have sperm and women have eggs, or ova. When a sperm and an ovum combine, you get a zygote: a cell that is a combination of these two cells. This is the beginning of a new human life, and the moment that this happens is called fertilization.

    Ova all have X chromosomes. Half of the sperm have Y chromosomes and the other half have X chromosomes. Girls have two X chromosomes. If a sperm with an X chromosome fertilizes the ovum, the fetus will be female. Boys have an X and a Y chromosome. If a sperm with a Y chromosome fertilizes the ovum, the fetus will be male.

    Problem

    Find the probability of a baby's gender.

    Materials

    • Permanent Marker
    • Masking tape
    • 2 paper cups
    • 3 green marbles
    • 1 red marble
    • Friend

    Procedure

    1. Mark one cup &ldquoova&rdquo, and put 2 green marbles into that cup.
    2. Mark the other cup &ldquosperm&rdquo and put on green marble and one red marble into that cup.
    3. Make a table with the different options: two green (GIRL), one red and one green (BOY).
    4. Look away and choose one marble from each cup. What are the chances that it will be a boy or a girl? If you choose one marble from each container again and again, how many boys and how many girls will you get? Have your friend tally the results in the table, then put the marbles back into the cups.
    5. Do this 30 times. How many boys did you get? How many girls?

    Resultados

    As your numbers increase, you&rsquoll get closer to having half girls and half boys. How close did you get?

    Since sperm are equally divided into X and Y chromosome sperm, the chances of having a boy or a girl should be equal. So why do some families have all girls or all boys?

    Each time a sperm meets an ovum, there is a 50% chance that it will make a boy and a 50% chance that it will make a girl. It doesn&rsquot matter what happened the time before that: each time an ovum is fertilized, this makes a new zygote that could be a boy or a girl.

    As numbers increase, the law of large numbers starts to become easy to see. If you take two or three families you know, they may not have equal numbers of boys and girls. However, if you take 200 random families, they will likely have an almost-equal number of girls and boys.

    Try this out, using families at your school or other community group as an example. Does the law of large numbers work?

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    Métodos

    Moths

    Insects were obtained from laboratory cultures reared on a maize-wheat germ diet. Eggs or pupae from the different strains were obtained from: ECB Z, France (French National Institute for Agricultural Research (INRA), UE Entomologie, Poitou-Charentes, France) and Hungary (T Dekker, Swedish University of Agricultural Sciences (SLU), Alnarp, Sweden) ECB E, USA (WL Roelofs, Cornell University, Ithaca, USA) and Slovenia (T Dekker, SLU) ACB, China (CH Zhao, Academia Sinica). Males and females were separated before eclosion and placed in different climate chambers maintained at 23 ± 1°C in a 17-hour:7-hour light-dark photoperiod. Newly emerged adults were separated daily and considered to be 0-day-old.

    Mating experiments

    We compared the mating success of males in relation to age. To test this we defined three age classes (0-, 2-, 4-day-old males) and set up two experiments in which females were in the presence of either one or three males of each class. ECB Z males and females were placed together into a cylindrical container (1 litre) with a source of water 1 hour before the onset of scotophase. After the onset of scotophase and during the entire 7-hour scotophase, events in the mating enclosure were monitored at intervals of 15 minutes in order to check courtship behaviour and mating occurrence. In the first series of experiments, we subjected each female to a one-male choice test (norte = 60 individuals for each of the three male classes, giving a total of 180 females), scoring the formation of mating pairs. For each age class we calculated the proportion of males accepted as mates (number of pairs observed/number of males tested). A χ 2 test was used to test the dependence of male mating success on age. In the second set of experiments, 60 females were permitted a choice between three males, one from each age class. Each male was anaesthetised and marked on the thorax using a paint marker pen and given a colour corresponding to his age class. Colours were rotated between trials and had no detectable effect on male mating success. For each mating pair observed (norte = 47), we noted the age class of the male. The proportion of males accepted as mates for each age class was calculated as the number of males of a given class accepted as mates over the number of mating pairs observed. Again, a χ 2 test was used to test the dependence of male mating success on age. Equal numbers of 0-, 2- or 4-day old females were used in the experimental design of both experiments. The 95% confidence intervals of individual proportion were computed according to the method described by Newcombe [51] using the online tool available at Vassarstats [52].

    Identification of male ECB Z scent

    Volatiles were extracted by placing hairpencils in hexane and recovering the solvent after 1 hour at room temperature. The samples were analysed on a GC (Hewlett-Packard 5890) connected to a MS (Hewlett-Packard 5972, EI 70 eV). A HP-1MS column (methyl siloxane, 30 × 0.25 mm, df = 0.25 μm, Agilent Technologies) was used and the oven temperature was maintained at 50°C for 2 minutes and then programmed at 10°C per minute to 250°C kept for 10 minutes (carrier gas helium, velocity 30 cm/second). The compounds were identified by comparison of their spectra with standard mass spectra and retention times. Confirmation of double bond position was obtained by DMDS derivatisation and subsequent GC-MS analysis [53].

    Behavioural assay

    In a one-male choice assay, we exposed females to 4-day-old males from which hairpencils had been ablated surgically on the day preceding the experiments. In order to facilitate hairpencil ablation, males were anaesthetised with carbon dioxide. Hairpencils were extruded by applying gentle pressure on the abdomen and trimmed with fine forceps to remove as much as possible. The same procedure was used on the sham-operated males with no removal of the hairpencils. The assays were conducted in a chamber consisting of a glass cylinder (13 cm diameter × 25 cm height) with steel screening covering the open ends. Airflow was generated by placing the arena in a wind tunnel together with the addition of a small fan. First, one calling female moth (0- to 4-day-old) with the pheromone gland exposed was introduced into the arena and placed upwind from the males. Single 4-day-old virgin males were then added downwind. Each male was given 10 minutes to mate successfully with the female. Odour replacements were made by introducing an odour source (filter paper) upwind from the female while the male was courting. The odour source was loaded with either 4-day-old male hairpencil extract (one male equivalent) or a synthetic blend mimicking the odour of those males. The synthetic mimic consisted of a blend of 20% Z9-16:OAc, 15% Z11-16:OAc, 53.5% 16:OAc and 11.5% Z14-16:OAc corresponding to 4/3/11/2 ng of individual compound in 20 μl of hexane. Positive and negative controls consisted of sham-operated males and operated males plus a filter paper with the solvent alone applied on to it. The trial was ended either when successful coupling was observed (the male was considered 'accepted as mate') or at the end of the allotted time. Each treatment was tested using 25 males. All the males included in the statistical analysis displayed and attempted to copulate with females. The proportions of males accepted as a mate in individual treatments were compared using z-tests (α = 0.05).

    Composition of male scent in relation to age and taxa

    To characterise hairpencil pheromone titre and composition in relation to age (ECB Z) and taxa (ECB Z and E and ACB), hairpencil volatiles were extracted in heptane containing a known amount of pentadecanyl acetate chosen as internal standard. Samples were analysed on a GC (Hewlett-Packard 5890) equipped with a flame ionisation detector. A HP-1MS column was used and the oven temperature was maintained at 80°C for 2 minutes and then programmed at 10°C per minute to 250°C kept for 10 minutes (carrier gas helium, velocity 60 cm/second).

    Statistical analyses

    All statistical tests were carried out in SPSS 16 software with the exception of the multivariate analysis of variation in pheromone components (absolute amounts in ng) of ECB Z and E and ACB males performed by canonical discriminant function analysis using JMP 7 software.

    Precursor analysis

    Fatty acid methyl ester extracts were prepared by base methanolysis. Total lipid extraction was performed by immersing ECB Z male abdominal tips in 100 μl of chloroform:methanol (2:1 v/v). After 1 hour, the tissues were removed and a gentle stream of nitrogen was applied to evaporate the solvent. Conversion of fatty acyl moieties to methyl esters was made by treating the samples with 100 μl of potassium hydroxide (0.5 M in methanol). The reaction was ended after 1 hour by the addition of 100 μl of hydrochloric acid (1.0 M in water). The fatty acyl methyl esters were recovered in hexane and the samples subsequently analysed by GC-MS. Double bond positions were confirmed by DMDS derivatisation.

    Collection of insect tissue and RNA extraction

    Male abdominal tips were carefully dissected from 0-, 2- and 4-day-old virgin male moths and stored at -80°C. Pheromone glands and abdomens from 0-day-old virgin female moths were dissected and stored similarly. Total RNA was isolated and purified from dissected tissues using the TRIzol reagent (Invitrogen) according to the manufacturer's recommended procedures.

    Cloning and sequence analysis of Δ14- and Δ11-desaturases from male and female

    Based on the publicly available sequence information (Δ11: AF441221 Δ14: AF441220), specific primers were designed to obtain sequence information corresponding to the Δ14- and Δ11-desaturases expressed in male and female O. nubilalis Z (primer sequences reported in Table 1).

    Total RNA (100 ng) was used to amplify a fragment corresponding to the ORF of the Δ14-desaturase gene. Two primers (Δ14-ORF-s plus Δ14-ORF-as) were used with the Superscript III One-Step RT-PCR kit (Invitrogen) following the manufacturer's instructions. Amplification products were analysed by electrophoresis on agarose gel. An amplification product of around 1250 base pairs was excised from the gel, purified using the Qiagen gel extraction kit (Qiagen) and cloned using TOPO TA cloning kit with PCR2.1-TOPO vector and One Shot TOP10 chemically competent Escherichia coli (Invitrogen) for sequencing. Subsequently, primers were designed to obtain 5'- and 3'-ends by rapid amplification of cDNA ends (Δ14-5'RACE and Δ14-3'RACE, respectively). We used the SMART RACE cDNA amplification kit (Clontech) following the manufacturer's protocol. The coding sequences were deduced with the sequencing result of the 5'-end, central region and 3'-end.

    For the Δ11-desaturase, two primers were designed to generate overlapping amplification products by rapid amplification of cDNA ends (Δ11-5'RACE for the 5'-region and Δ11-3'RACE for the 3'-region). The coding sequences were deduced with the sequencing result of the 5'- and 3'-ends.

    RT-PCR

    Total RNAs (50 ng) were used to amplify fragments of the Δ14- and Δ11-desaturase genes using the Superscript III One-Step RT-PCR kit (Invitrogen) following the manufacturer's instructions. The gene-specific primer sets used were Δ11-RT-s and Δ11-5'RACE for Δ11, Δ14-ORF-s and Δ14-5'RACE for Δ14. PCR products were analysed on a 1% agarose gel and visualised with ethidium bromide.


    Ver el vídeo: 02 Control del ciclo celular pt 2 (Agosto 2022).